При прививке побегов из каллюсной меристемы на перескиопсисы следует соблюдать относительную чистоту материалов: почвенный субстрат перед использованием заливают крутым кипятком, так же поступают и с горшками. Перескиопсисы можно использовать «в чистом» виде, но лучше заранее привить на них «переходники» — небольшие, около 5 мм детки эхинопсисов. Естественно, подобной прививке дают время срастись и проявить видимый рост.

Перескиопсисы вынимают из субстрата, отмывают субстрат с корней и обрабатывают одним из стерилизующих растворов. После этого перескиопсисы высаживают в обработанный субстрат и закрывают чистым колпаком. Подвоям дают время для адаптации и только после проявления видимого роста приступают к прививке.

Прививают традиционно, методом «прямого среза». Прививку помещают в мягкие условия и после надежного срастания постепенно приучают к свету. Во время роста привой довольно часто образует зачатки придаточных корней, так что укоренение этих растений не представляет труда. В противном случае проводят стимуляцию корнеобразования путем перерезания части стелы привоя или инъецированием водным раствором ИУК.

Микроразмножение соматическими эмбрионами

Название метода говорит само за себя — из каллюсной меристемы формируются не побеги, а зародыши, аналогичные зародышу семени. В большинстве случаев в качестве материала используют зародыши, находящиеся еще в завязи цветка — ткани этих зародышей интенсивно делятся и представляют собой плодотворный материал для исследований на генном и цитологическом уровне. Однако применительно к кактусам в доступной литературе не удалось найти описания результатов таких экспериментов. Автор проводил подобные опыты, но они были единичны, и судить о результатах представляется некорректно, хотя эти единичные эксперименты были очень эффективны.

В подавляющем большинстве случаев материалом для данного способа являются созревшие семена, порой лежалые. Всхожесть у таких семян редко превышает 30%. При достаточном количестве семян с такой всхожестью можно смириться и проводить традиционный посев в почвенный субстрат. Но каково же бывает разочарование кактусовода, когда он получает десяток семян долгожданного растения от зарубежного или внутреннего поставщика, а всхожесть этих семян оставляет желать лучшего.

При микроразмножении меристематическими эмбрионами из одного жизнеспособного зародыша можно получить до 2 — 3-х десятков и даже более растений. Это эффективнее вегетативного размножение черенками или боковыми побегами-детками.

В простейшем варианте семена стерилизуют по описанной выше методике и размещают на искусственных средах. На каждое семя целесообразнее нанести по капле дистиллированной воды.

*« качестве эксплантатного материала использовалась меристема от: Mammillaria parkinsonii, M.pringleyi, M.hafmiana, Astrophytum asterias, A.capricorne, A.ornatum, Blossfeldia Hlliputana, Ariocarpus scapharostru.4, A.retusus, Roseocuclus kolschoubeyanus, Gymnocalycium comarapense, G.gibbosum, G.fleisherianum, Parodia elegans, P.lauii, P.neglectoides, P.backebergiana..

** при достаточном навыке удается выделить зародыши далее из семян таких видов, как Azlekium ritteri, Blos.sfeldia .чр..чр., мелкосеменные Parodia sp.sp., Strombocactus disciformis.

Рис. 95. Бинокулярная лупа-козырек — удобное приспособление при работе с семенами.

Фото 455. Зародыши Echinocactus horizonthalonius, освобожденные от наружного интегумента (1) и от внутреннего интегумента (2). Внутренний интегумент имеет вид тонкой коричневатой пленочки и насыщен ингибиторами роста клеток — при культивировании на питательных средах его необходимо удалять. На освобожденные зародыши наносят по капле дистиллированной воды в ''елях стимулирования их более успешного набухания

Более результативной представляется методика выделенных зародышей. Суть ее следующая:

— удобные по размеру для манипуляции семена** обрабатывают этиловым спиртом;

— переносят на чистую фильтровальную бумагу и остро отточеным глазным скальпелем при визуальном наблюдении через лупу* удаляют переднюю часть — «крышечку» семени;

— с помощью острой препаровальной иглы постепенно обламывают семенную кожуру и обнажают зародыш;

— семена-лодочки (Astrophytum sp.sp., Frailea sp.sp.) берут за «борта» глазными пинцетами, разрывают и извлекают зародыши.

В специально отведенной для этого главе будет описано и строение семени, и строение зародыша. Здесь же следует отметить, что кроме плотной наружной кожуры зародыш покрыт тоненькой пленочкой**. Пленочка имеет коричневатую окраску или бесцветная, может прилегать к кожуре, но чаще облегает зародыш. В этой пленочке содержится большое количество ингибиторов ростовых процессов, в частности АБК, поэтому ее необходимо удалять.

Выделенные зародыши помещают на увлажненную фильтровальную бумагу в чашки Петри для набухания, либо сразу на питательную среду и наносят на них по капле дистиллированной воды. Более простой прием — высеять стерилизованные семена на влажную бумагу в чашки Петри и дождаться их прорастания. Но здесь опять-таки встает проблема всхожести семян.

В последнем случае набухшие зародыши стерилизуют и высевают на питательную среду при соотношении ауксинов и цитокининов 10 : 1.

Примерно через месяц выделяют наиболее активно растущие участки каллюсной меристемы и пересаживают их на свежую среду с соотношением ауксинов и цитокининов 1 : 1. В опытах автора зародыши из семян 93 видов кактусов (из родов Ariocarpus, Roseocactus, Neogomesia, Astrophytum, Mammillaria, Parodia, Gymnocalycium, Blossfeldia, Aztekium, Strombocactus, Discocactus) к концу третьего месяца начинали формировать эмбрионы, а еще через 1,5 — 2 месяца количество эмбрионов достигало 20 — 30.

Эмбрионы отделялись и высаживались на первоначальную среду при соотношении ауксинов и цитокининов — 10 : 1 и через 7 — 20 дней прививались на тонкие черенки перескиопсисов.

Ступпи и Нагл дают несколько отличную методику на примере микроразмножения A riocarpus retusus.

Они использовали более твердую среду Мурасиге-Скуга (10 г/л агара) с добавлением 200 мл/л воды кокосового ореха в качестве цитокининового компонента и 20 мг/л сахарозы, т.е. 2/3 от рецептурной дозы. Показатель рН доводили до 5,9

Семена стерилизовались 70% этиловым спиртом и высевались на питательную среду. Через 4 месяца отбиралась каллюсная меристема и высаживалась на свежую среду с содержанием меньшего количества кокосовой воды — 150 мл/л. Субкультивирование проводилось каждые восемь недель.

Первые соматические эмбрионы появлялись на 3 — 4-й месяц после первоначального посева.

* с этой целью используют либо часовую лупу, либо бинокулярную лупу-козырек.

** эти покровы семени называются наружный и внутренний интегумент.

Фото 456 - 460. Из статьи W.Stuppy & W.Nagl «Regeneration

and propagation ofAriocarpus retusus Scheidw. (Cactaceae)

via somatic embryagenesis». (Bradleya 10/1992)

456. Группа соматических эмбрионов на кусочке каллюса через 14 месяцев субкультивирования.

457. Соматический эмбрион крупным планом — видны семядоли.

458. Соматические эмбрионы на безгормональной среде — видны характерные корневые волоски на нижней части эмбрионов.